Adapté aux échantillons vivants

Les algorithmes de l’OSR fonctionnent en temps réel pour éliminer les retards causés par le moyennage des trames ou la reconstruction de l’image, en fournissant des images instantanées à super-résolution pour vous permettre d’obtenir les résultats plus rapidement.

Cela permet de concevoir des expériences en super-résolution avec des cellules vivantes, qui sont encore davantage améliorées par les vitesses d’imagerie ultra-rapides et les capacités d’acquisition multicanal du disque rotatif confocal.

Protéines EB3 se fixant à l’extrémité des microtubules qui s’étendent dans les cellules HeLa vivantes. Les protéines EB3 ont été marquées à la GFP par transgénèse.^*1

_{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Kaoru Kato, PhD, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology Biomedical Research Institute}

Découvrez des détails en super-résolution dans les échantillons

Pour observer les structures intracellulaires, il est nécessaire d’éviter toute fluorescence hors foyer pouvant flouter les véritables données dans l’image finale. Le système de microscope IXplore SpinSR intègre un système optique confocal qui permet d’utiliser plusieurs objectifs, par exemple les optiques à huile de silicone, ce qui permet ainsi l’acquisition d’images en super-résolution nettes avec moins de flous, même dans les échantillons épais. Par conséquent, aucun tampon ou fluorophore spécial n’est requis. Il n’est donc pas nécessaire de changer les échantillons ou les protocoles de préparation lors du passage en super-résolution.

Images à prises intermittentes d’un neurone primaire de souris marqué au EGFP après une co-culture avec astrocyte pendant 2 semaines. Il est aisé de constater la différence entre l’épine immature (flèche jaune) et l’épine mature (flèche bleue) et de détecter le changement morphologique au fil du temps. La 3D a été acquise avec un temps d’exposition de 500 ms/image, et un pas de 0,15 µm selon l’axe des Z avec 41 coupes. Les images ont été acquises toutes les 2 minutes pendant 1 heure. 3D affichée par FV31S-DT.

_{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Yuji Ikegaya, PhD
Laboratory of Chemical Pharmacology, Graduate School of Pharmaceutical Sciences, The University of Tokyo}

Fuseau mitotique de cellule en métaphase*1

_{Des cellules HeLa dérivées du cancer de l’utérus humain ont été fixées et colorées respectivement pour α-tubline (microtubules, rouge) et Hec1 (kinétochores, vert). L’ADN a été coloré avec DAPI (chromosomes, bleu). Les chromosomes interagissent avec les microtubules qui forment le fuseau mitotique via des kinétochores qui s’assemblent sur la région centromérique des chromosomes.
Image reproduite avec l’aimable autorisation de : Masanori Ikeda and Kozo Tanaka, Department of Molecular Oncology, Institute of Development, Aging and Cancer}

Complexe de pores nucléaires d’une cellule Hela

_{Nup153（Alexa 488 : vert), Nup62(Alexa 555 : rouge)
Image reproduite avec l’aimable autorisation de : Hidetaka Kosako, Fujii Memorial Institute of Medical Sciences, Tokushima University}

Une imagerie à super-résolution rapide et un grand champ d’observation

Au lieu de balayer laborieusement l’ensemble du champ d’observation, le capteur d’imagerie sensible du microscope SpinSR10 prend un ensemble d’instantanés de toute la surface de l’échantillon en une seule étape pour en acquérir rapidement l’image, ce qui permet aux chercheurs d’observer des phénomènes biologiques très rapides. En mode grand champ et confocal, le système optique du microscope a un indice de champ de 18, ce qui lui permet de prendre des images avec un champ d’observation plus grand, tandis que deux caméras permettent aux utilisateurs d’acquérir simultanément des images bicolores en super-résolution.

Fondée sur un système optique confocal, la technologie Olympus Super Resolution (OSR) permet de réaliser des coupes optiques pour acquérir des images en super-résolution d’une grande clarté avec un bruit de fond réduit.

_{Données d’images d’application reproduites avec l’aimable autorisation de : Hatsuho Kanoh, Tomoki Yano et Sachiko Tsukita, Graduate School of Frontier Biosciences et Graduate School of Medicine, université d’Osaka}

Un éclairage uniforme de tout le champ d’observation

Le changeur de grossissement est conçu pour le microscope inversé IX83P2ZF et fournit un éclairage uniforme de tout le champ d’observation. Le système optique télécentrique du changeur optimise les performances des objectifs tout en permettant une commutation motorisée directe entre le confocal et la super-résolution.

Réduisez l’aberration sphérique

L’unité de bague de correction à distance est utilisée pour ajuster la position des lentilles à l’intérieur l’objectif afin de corriger l’aberration sphérique causée par les différences d’indices de réfraction, ce qui améliore sensiblement le signal, la résolution et le contraste. L’unité IX3-RCC fonctionne avec n’importe quel objectif UIS2 muni d’une bague de correction.

Gestion des expériences complexes

Le gestionnaire de procédures simplifie l’acquisition d’images multicolores, à prises à intervalles ou par empilements de plans Z. Le gestionnaire d’expériences graphique programmable (GEM) permet aux utilisateurs de concevoir une automatisation plus complexe depuis une interface graphique qui prend en charge un large éventail de protocoles d’imagerie expérimentale et de déclenchement de dispositifs. Concevez des protocoles expérimentaux sur mesure pouvant être modifiés facilement à tout moment selon vos besoins au cours du processus d’imagerie.

https://adobeassets.evidentscientific.com/content/dam/video/video/library/SpinSR10-Mitotic-cu[…]alcell-Chromosome-Blue-Tubulin-Green-ZO1-Red_480.mp4

Cellule épithéliale mitotique en culture. (Chromosome : bleu, tubuline : vert, ZO1 : rouge)

_{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Hatsuho Kanoh, Tomoki Yano, Sachiko Tsukita
Graduate School of Frontier Biosciences et Graduate School of Medicine, université d’Osaka}

Cellules de Purkinje marquées avec GFP. Image XYZ avec image confocale et super-résolution dans différentes positions de l’axe Z. Les images à très grande résolution sont projetées sur l’axe Z (10 coupes). 3D affichée par FV31S-DT.

_{Données d’images fournies avec l’aimable autorisation de : Yukari Takeo, Michisuke Yuzaki, PhD., Department of Physiology, School of Medicine, Keio University}