Das digitale Bildgebungssystem APEXVIEW APX100 unterstützt viele verschiedene Mikroskopieverfahren. Die einfach anzuwendenden, komfortablen Funktionen und die intuitive Software ermöglichen eine effizientere Ausführung verschiedener Forschungsanwendungen, ohne Kompromisse bei der Bildqualität einzugehen.
Diese Galerie zeigt Anwendungsbeispiele, die mit dem digitalen Bildgebungssystem APX100 aufgenommen wurden. Bei anwendungsbezogenen Fragen stehen wir gerne zur Verfügung.
Mehrkanal-Fluoreszenz
- Betrachten Sie Proben mit mehreren Färbungen und in Kombination mit anderen Bildgebungsverfahren wie Phasenkontrast oder Gradientenkontrast.
- Bis zu acht Fluoreszenzmodule ermöglichen unterschiedliche Versuchsanordnungen.
- Mit der automatischen Einstellung der Belichtungszeit und des Z-Offsets für jeden Kanal lassen sich in kürzester Zeit Bilder unter optimalen Bedingungen aufnehmen.
- Die zusammengeführten Bilder werden übersichtlich angezeigt, sodass jede Aufnahme Ihren Standards entspricht.
BPAE-Zellen. Färbung: Maus-Anti-α-Tubulin, BODIPY FL Ziege-Anti-Maus-IgG, Texasrot-X-Phalloidin, DAPI.
Mit 5 Fluorochromfarbstoffen markiertes Kleinhirn einer Ratte
Einfache Aufnahme von Mehrkanal-Fluoreszenzbildern mit Wellenlängen von UV bis NIR.
Verwendete Färbungen: Hoechst (blau), GFAP (grün), MAP2 (orange), Calbindin (rot), MBP (magenta).
Objektiv: UPLXAPO4X
Stitching
- Sie können ganze Gewebeproben aufnehmen oder den Status von Zellkulturen in Flaschen über große Bereiche schnell und mit hoher Auflösung beurteilen.
- Durch das hochpräzise Stitching sind die Übergänge zwischen den Bildern sowohl im Hellfeld- als auch im Fluoreszenz-Aufnahmemodus nahezu unsichtbar.
- Selbst schräg stehende oder unebene Proben werden sauber zusammengefügt.
Mauslunge, aufgenommen mit dem UPLXAPO4X Objektiv. Färbung: HE.
Z-Stapel
- Bei dicken Proben können Sie mehrere Bilder in Z-Richtung aufnehmen.
- So werden mit nur wenigen Klicks vollständig fokussierte Bilder erstellt.
- Durch TruSight 3D-Dekonvolution sind die Bilder scharf und verzerrungsfrei.
Subzelluläre Lokalisierung von Kendrin/Perizentrin, Zentrosomenprotein. Bildquelle: Kazuhiko Matsuo, Ph.D., Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy, Kyoto Prefectural University of Medicine.
Zeitraffer-Bildgebung
- Die Veränderungen in einer lebenden Zelle oder einer ganzen Zellkultur können kontinuierlich über einen bestimmten Zeitraum aufgezeichnet werden.
- Ein eingebauter Antivibrationsmechanismus und ein optionaler Inkubator sorgen für Stabilität bei der Bildaufnahme.
- In Kombination mit der optionalen Vorrichtung zur Wirkstoffabgabe lässt sich die Reaktion der Zellen unmittelbar nach der Wirkstoffabgabe in Echtzeit beobachten.
Scratch-Test
Zeitraffer-Bildgebung von Endothelzellen der menschlichen Aorta (HAEC) (2 Tage) eines Scratch-Tests.
Bildquelle: Dr. Kazutaka Ueda, Department of Cardiovascular Medicine, The University of Tokyo Hospital.
Befruchtete Eizelle einer Maus
4-Stunden-Zeitraffer-Untersuchung der befruchteten Eizelle einer Maus.
Antioxidative Wirkung in Mitochondrien
Mitochondrien, die durch Zugabe von H2O2 oxidiert wurden (erhöhte Intensität), wurden danach durch die antioxidative Wirkung reduziert (geringere Intensität).
- Zelle: HeLa-Zelle
- Markierung: OxiORANGE
- Objektiv: UPLXAPO40X
- Zeitintervall: 3 Minuten
- Dauer: 1 Stunde
Intensitätsprofil
Mehrfarben-Bildgebung der RBL-2H3-Zellmigration
Drei behandelte RBL-2H3-Zellarten wurden gemischt, und ihr Migrationszustand wurde mittels mehrfarbiger Zeitrafferaufnahmen beobachtet. Bei jeder Behandlung wiesen die Zellen laut Tracking-Analyse eine ähnliche Migration auf.
- Zelle: RBL-2H3-Zellen
- Markierung: DiO (grün), DiI (gelb), DiD (rot)
- Objektiv: UPLXAPO20X
- Intervalldauer: 30 Minuten
- Dauer: 18 Stunden
Tracking-Länge: (durchschnittlich) μm
Fluoreszenz-Bildgebung
Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung (FISH) Probe
Aufgenommen mit einem UPLXAPO60XO X Line Objektiv.
Kolokalisierung von NeuN und γ-H2AX in einem Affenhirn
Färbung: Immunzytochemie.
Bildquelle: Rui Han, Lab of Professor Xiaojiang-Li, Guangdong-HongKong-Macau Institute of CNS Regeneration, Jinan University.
Haselpollen
Autofluoreszenz, aufgenommen mit einem UPLXAPO60X Öl-Objektiv. Verarbeitet mit TruSight Dekonvolution.
Brustdrüse einer ausgewachsenen Maus (Krt14/Krt8)
Färbung: Immunzytochemie.
Bildquelle: Chunye Liu, Labor von Prof. Yi Zeng, Center of Excellence in Molecular Cell Science, CAS.
Tubulin und Zellkern von BSC-1-Zellen
Färbung: Immunzytochemie, Weiß: Zellkern, Zyan: Tubulin.
Gereinigtes HeLa-Zellsphäroid
Färbung: Immunzytochemie, Blau: DAPI, Zellkern, Grün: AF488, Ki67, Rot: AF555, Aktin.
Ptk2-Zellen
Färbung: DAPI, Mitotracker Red, Acti-Stain 488.
Rattenhirn im Querschnitt
Färbung: Hoechst, RPCA-NF-L-ct und MCA-7D5.
Mausniere
Alexa Fluor 488 WGA, Alexa Fluor 568 Phalloidin, DAPI.
Hellfeld-Bildgebung
Mit Alcianblau und Nuclear Fast Red gefärbter E15.5-Mausembryo
Bildquelle: 1.2.Naoki Takeshita, MD, 1.Kenta Yashiro Professor, MD, Ph.D., 1.Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy und 2.Department of Pediatrics, Graduate School of Medical Science, Kyoto Prefectural University of Medicine.
Adenom-Gewebeprobe
Zusammengesetztes Hellfeldbild, aufgenommen mit einem LUCPLFLN40XPH-Objektiv. Bildquelle: Deutsches Krebsforschungszentrum, DKFZ.,
Xenopus-Blutzellen
Färbung: HE.
Maisstammzelle
Färbung: Safranin-Methylblau.
Cyp26b1-Expressionsmuster im E9.5-Mausembryo nach In-situ-Hybridisierung eines Whole-Mount-Präparats
Bildquelle: 1.2.Naoki Takeshita, MD, 1.Kenta Yashiro Professor, MD, Ph.D., 1.Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy und 2.Department of Pediatrics, Graduate School of Medical Science, Kyoto Prefectural University of Medicine.
Reifer Embryo des Hirtentäschelkrauts (Capsella)
Färbung: Trichrom.
Gradientenkontrast: Sehen Sie Ihre Probe in neuem Licht
- Anwendbar mit jedem Olympus Objektiv.
- Weniger Beeinträchtigung durch Meniskus, Behälterdeckel und Wassertropfen.
- Kann mit Schalen mit Glas- und Kunststoffboden und Multiwell-Platten verwendet werden.
- Die Bildgebung ist auch durch Kunststoffdeckel von Petrischalen und Multiwell-Platten möglich, was das Verunreinigungsrisiko verringert.
Expression von membrantransloziertem mCherry in HEK293T-Zellen. Bildquelle: Rie Saba, Ph.D., Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy, Kyoto Prefectural University of Medicine.
Mit Gradientenkontrast aufgenommene Bilder
Rattenhirn
HEK-293-Zellen
Rattenhoden
