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Système de surveillance de l’incubation CM

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Le système de surveillance de l’incubation CM permet l’observation et l’analyse de données d’une variété de cellules dans divers récipients. Nous présentons ici des expériences réelles et des données acquises au moyen de systèmes CM20 et CM30.
Si vous avez des questions ou souhaitez planifier une démonstration, n’hésitez pas à nous contacter.

Analyse de cultures cellulaires

Analyses

Images prises à intervalles

CSM (cellules souches mésenchymateuses)

Conditions – Récipient : plaque à 6 puits / Intervalle : 3 heures / Période de mesure : 7 jours

iPSC (cellules souches pluripotentes induites)

Conditions – Récipient : T25 / Intervalle : 3 heures / Période de mesure : 20 jours

HEK293 (cellules rénales embryonnaires humaines 293)

Conditions – Récipient : plaque à 12 puits / Intervalle : 3 heures / Période de mesure : 7 jours

HepG2 (lignée cellulaire d’hépatome humain)

Conditions – Récipient : plaque à 12 puits / Temps d’intervalle : 3 heures / Période de mesure : 12 jours

NHEK (kératinocytes épidermiques humains normaux)

Conditions – Récipient : T75 / Intervalle : 3 heures / Période de mesure : 9 jours

HDFa (fibroblastes dermiques humains normaux)

Conditions – Récipient : T75 / Intervalle : 3 heures / Période de mesure : 7 jours

HDFa (fibroblastes dermiques humains normaux)

Conditions – Récipient : plaque à 24 puits / Intervalle : 1 heure / Période de mesure : 5 jours

MCF7 (cellules de cancer du sein humaines)

Conditions – Récipient : plaque à 96 puits / Intervalle : 1 heure / Période de mesure : 7 jours

Cellules A549 (cellules épithéliales alvéolaires basales adénocarcinomateuses humaines)

Conditions Vessel: 12 well Interval time: 1 H Measurement period: 4 Days *Acquire with custom mode

Cellules SH-SY5Y (neuroblastome)

Conditions – Récipient : plaque à 12 puits / Intervalle : 1 heure / Période de mesure : 4 jours * Acquisition en mode personnalisé

Test de cicatrisation

MCF7 (cellules de cancer du sein humaines)

Conditions – Récipient : plaque à 24 puits / Intervalle : 1 heure / Période de mesure : 4 jours
* Acquisition en mode personnalisé

Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de : ACEL Inc.

Test de cicatrisation

MCF7 (cellules de cancer du sein humaines)

Conditions – Récipient : plaque à 24 puits / Intervalle : 6 heures / Période de mesure : 3 jours
* Acquisition en mode personnalisé

Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de : Minsoo Kim, PhD
Professeur associé au Medical education center, Graduate School of Medicine, Université de Kyoto

Scratch Assay

https://adobeassets.evidentscientific.com/content/dam/video/video/library/20210311_scratch_MB231_MCF7_PS0001_00001.mp4

Migration of ENCDCs from E6 chick midgut

https://adobeassets.evidentscientific.com/content/dam/video/video/library/DEV201090_MovieS1.mp4

Migration des cellules entériques dérivées de la crête neurale (ENCDC) à partir de l’intestin moyen d’un embryon de poulet au stade E6

Intestin moyen d’un embryon de poulet au stade E6

Brève description : L’addition de 10 ng/ml de GDNF produit une stimulation spectaculaire de la migration des cellules entériques dérivées de la crête neurale (ENCDC) hors de l’intestin après 32 heures de culture.

Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de : Ádám Soós, PhD
Département d’anatomie, histologie et embryologie, Université Semmelweis

Enregistrement d’images de cellules vivantes d’explants de l’intestin moyen d’embryons de poulet au stade E6

Explants de l’intestin moyen d’un embryon de poulet au stade E6

Les cellules entériques dérivées de la crête neurale (ENCDC) migrent hors des explants de l’intestin en réponse à 10 ng/ml de GDNF après 12 heures de culture, puis retournent vers les explants suite à l’inhibition de DUSP6 par le BCI pendant 8 heures. Les cellules continuent de migrer hors des explants après le retrait du BCI. Durée : 32 h

Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de : Ádám Soós, PhD
Département d’anatomie, histologie et embryologie, Université Semmelweis

Live cell imaging recordings of E6 chick midgut explants

https://adobeassets.evidentscientific.com/content/dam/video/video/library/DEV201090_MovieS2.mp4

Primary culture of Bone Marrow Derived MSC

https://adobeassets.evidentscientific.com/content/dam/video/video/library/220127humanBMC_PS0001_00001-2(2).mp4

Culture primaire de cellules souches mésenchymateuses dérivées de la moelle osseuse

Conditions – Récipient : plaque à 24 puits / Intervalle : 1 heure / Période de mesure : 11 jours

Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de : ACEL Inc.

Sphère de cellules souches neurales

Conditions – Récipient : plaque à 96 puits à fond rond / Intervalle : 1 heure / Période de mesure : 3 jours
* Acquisition en mode personnalisé

Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de : ACEL Inc.

NSC sphere

https://adobeassets.evidentscientific.com/content/dam/video/video/library/mNSC_U_220214_PS0001_00001(2).mp4

Spheroid

https://adobeassets.evidentscientific.com/content/dam/video/video/library/210315mNSCsphere_PS0001_00001.mp4

Sphéroïde

Sphère de cellules souches neurales

Conditions – Récipient : plaque à 12 puits / Intervalle : 1 heure / Période de mesure : 6 jours
* Acquisition en mode personnalisé

Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de : ACEL Inc.

Cellules végétales

Nicotiana tabacum L.SR1

Conditions – Récipient : plaque à 12 puits / Intervalle : 1 heure / Période de mesure : 8 jours
* Acquisition en mode personnalisé

Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de : Shinjiro OGITA, PhD
Directeur du Science Center et professeur à la Faculty of Bioresource Sciences, département des ressources locales, Université préfectorale de Hiroshima

Plant cells

https://adobeassets.evidentscientific.com/content/dam/video/video/library/GROWTH_OF_SUSPENSION_CELLS_PS0001_00001.mp4

Webinaires

* Tous les webinaires sont uniquement disponibles en japonais.