Galerie d’images créées par le système d’imagerie numérique APX100
Le système d’imagerie numérique APEXVIEW APX100 prend en charge un grand nombre de
méthodes d’observation. Grâce à ses fonctions conviviales et pratiques et à son logiciel intuitif,
il améliore l’efficacité de diverses applications de recherche sans compromettre la qualité des images.
Cette galerie présente des exemples d’images prises dans diverses applications avec le système d’imagerie
numérique APX100. Si vous avez des questions sur la façon dont vous pouvez l’utiliser dans vos applications, contactez-nous !
Fluorescence multicanal
- Observez la fluorescence d’échantillons marqués avec plusieurs fluorophores et en combinaison avec d’autres modes d’imagerie comme le contraste de phase ou le contraste de gradient.
- Il est possible d’utiliser jusqu’à huit cubes de miroirs pour s’adapter à de nombreuses conditions expérimentales.
- Prenez rapidement des images dans des conditions optimales grâce aux étalonnages automatisés du temps d’exposition et du décalage de plan focal pour chaque canal.
- L’appareil affiche les images fusionnées de manière impeccable pour une qualité d’image finale irréprochable.
Cellules endothéliales d’artères pulmonaires bovines.Marquage : anti-α-tubuline de souris, IgG de chèvre antisouris BODIPY FL, phalloïdine Texas Red-X, DAPI
Cervelet de rat marqué avec cinq fluorophores
Acquerrez facilement des images de fluorescence multicanal à des longueurs d’onde allant des UV au proche infrarouge.
Fluorophores utilisés : Hoechst (bleu), GFAP (vert), MAP2 (orange), calbindine (rouge), MBP (magenta)
Objectif : UPLXAPO4X
Assemblage
- Faites l’acquisition d’images d’échantillons de tissus entiers ou évaluez rapidement l’état des flacons de culture cellulaire sur de grandes zones en haute résolution.
- L’assemblage de haute précision rend presque invisibles les jonctions entre les images dans les modes d’acquisition en fond clair et de fluorescence.
- Même les échantillons inclinés ou irréguliers peuvent être assemblés de manière impeccable.
Image de poumon de souris prise avec un objectif UPLXAPO4X. Coloration : HE.
Empilement Z
- Faites l’acquisition de plusieurs images de plusieurs plans focaux pour pouvoir observer les échantillons épais.
- Créez des images entièrement nettes en quelques clics.
- Obtenez des images nettes présentant un bon piqué grâce à la déconvolution TruSight™ 3D.
Localisation subcellulaire de la protéine centrosomale kendrine/péricentrine. Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation du Dr Kazuhiko Matsuo, Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy, Kyoto Prefectural University of Medicine.
Imagerie à intervalles
- Enregistrez en continu l’évolution d’une cellule vivante ou de toute une culture de cellules au fil du temps.
- Un mécanisme intégré d’isolation contre les vibrations et un incubateur en option assurent une acquisition d’images stable.
- En associant le système à l’unité d’administration de médicament en option, vous pouvez observer la réponse des cellules en temps réel immédiatement après l’administration d’un médicament.
Test de cicatrisation
Imagerie à intervalles d’un test de cicatrisation de cellules endothéliales aortiques humaines (2 jours).
Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation du Dr Kazutaka Ueda, Department of Cardiovascular Medicine, The University of Tokyo Hospital.
Ovule de souris fécondé
Quatre heures d’observation à intervalles d’un ovule de souris fécondé
Effets d’un antioxydant sur les mitochondries
Les mitochondries qui sont oxydées (augmentation de l’intensité de la fluorescence) par l’addition de H2O2 sont ensuite réduites (diminution de l’intensité de la fluorescence) par l’effet de l’antioxydant.
- Cellule : cellule HeLa
- Marquage : OxiORANGE
- Objectif : UPLXAPO40X
- Intervalles de temps : 3 minutes
- Durée : 1 heure
Profil d’intensité
Imagerie multicolore de cellules RBL-2H3 en cours de migration
Trois types de cellules RBL-2H3 traitées ont été mélangés, et leur migration a été observée au moyen d’une imagerie à intervalles multicolore. L’analyse du suivi des cellules a montré que les cellules migraient de façon similaire avec tous les traitements.
- Cellule : cellules RBL-2H3
- Marquage : DiO (vert), DiI (jaune), DiD (rouge)
- Objectif : UPLXAPO20X
- Intervalles de temps : 30 minutes
- Durée : 18 heures
Distance parcourue (en moyenne) : μm
Imagerie de fluorescence
Échantillon d’hybridation in situen fluorescence (FISH)
Image prise à l’aide d’un objectif X Line™ UPLXAPO60XO
Colocalisation de NeuN et γ-H2AX dans un cerveau de singe
Coloration : immunocytochimie
Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de Xiaojiang-Li, Guangdong-HongKong-Macau Institute of CNS Regeneration, université de Jinan
Pollen de noisetier
Autofluorescence, image prise avec un objectif UPLXAPO60X à huile. Traitée avec la déconvolution TruSight.
Glande mammaire de souris adulte (Krt14/Krt8)
Coloration : immunocytochimie
Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de Chunye Liu, Laboratoire du professeur Yi Zeng,
Center of Excellence in Molecular Cell Science, CAS
Tubuline et noyau de cellules BSC-1
Colorant : immunocytochimie,
blanc : noyau cellulaire, cyan : tubuline
Sphéroïde de cellules HeLa clarifié
Colorant : immunocytochimie, bleu : noyau DAPI,
vert : AF488 Ki67, rouge : AF555 actine
Cellules Ptk2
Colorant : DAPI, rouge Mitotracker, Acti-Stain 488
Coupe transversaled’un cerveau de rat
Coloration : Hoechst, RPCA-NF-L-ct et MCA-7D5
Rein de souris
WGA Alexa Fluor 488, phalloïdine Alexa Fluor 568, DAPI
Imagerie en fond clair
Embryon de souris E15.5coloré au bleu alcian etau rouge rapide nucléaire
Données d’image reproduites avec l’aimable autorisation de 1.2.Naoki Takeshita, MD, 1.Professeur Kenta Yashiro, MD, Ph.D., 1.Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy et 2.Department of Pediatrics, Graduate School of Medical Science, Kyoto Prefectural University of Medicine.
Échantillon de tissu d’adénome
Image en fond clair assemblée, prise à l’aide d’un objectif LUCPLFLN40XPH. Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation du centre de recherche allemand sur le cancer (Deutsches Krebsforschungszentrum, DKFZ).
Cellules sanguines de Xenopus
Coloration : HE
Cellule souche de maïs
Coloration : bleu de méthyle safranine
Profil d’expression de Cyp26b1 dans un embryon de souris E9.5 par hybridation in situ sur un montage d’embryon entier
Données d’image reproduites avec l’aimable autorisation de 1.2.Naoki Takeshita, MD, 1.Professeur Kenta Yashiro, MD, Ph.D., 1.Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy et 2.Department of Pediatrics, Graduate School of Medical Science, Kyoto Prefectural University of Medicine.
Embryons matures de capsella
Coloration : trichome
Contraste de gradient : voyez votre échantillon sous un nouveau jour
- Fonctionne avec n’importe quel objectif Olympus
- Moins affecté par les ménisques, les couvercles de récipient et de gouttelettes d’eau
- Peut être utilisé avec des boîtes de Petri à fond en verre et en plastique et des plaques multipuits
- Prenez des images à travers les couvercles en plastique des boîtes de Petri et des plaques multipuits et réduisez ainsi les risques de contamination.
Expression de la protéine mCherry transloquée dans la membrane de cellules HEK293T. Données d’images reproduites avec l’aimable autorisation de Rie Saba, Ph.D., Division of Developmental Biology and Anatomy, Department of Anatomy, Kyoto Prefectural University of Medicine.
Images prises en contraste de gradient
Cerveau de rat
Cellules HEK-293
Testicules de rat
