Microscopio a scansione laser confocale FLUOVIEW FV4000
Trasforma le tue immagini mediante il microscopio a scansione laser confocale FLUOVIEW™ FV4000. La tecnologia di imaging avanzata permette di acquisire delle immagini a maggiore precisione per facilitare l'attività dei ricercatori attraverso l'ottenimento di dati più affidabili dai propri campioni. Integrando nel sistema il nostro rivoluzionario rilevatore SilVIR™, è possibile ridurre il rumore, aumentare la sensibilità e migliorare la risoluzione fotonica in modo significativo. Con il microscopio confocale FV4000 i ricercatori possono acquisire dei dati di immagini quantitativi di maggiore qualità con un risparmio di tempo e energie.
- Product Status: Questo prodotto e i precedenti sistemi della serie FV sono stati sostituiti dal FV5000.
Microscopio a scansiona laser confocale FV4000
Trasformazione dell'imaging di precisione
Le nostre competenze maturate per oltre un secolo nel settore ottico hanno portato alla produzione del microscopio FV4000, un'innovazione tecnologica che assicura un'elevata qualità delle immagini con il potenziale di cambiare la capacità di osservazione e migliorare la ricerca.
- È possibile garantire una qualità delle immagini superiore con un rilevatore SilVIR™ a bassissimo rumore e delle caratteristiche ineguagliabili nel settore come sei canali, dieci linee laser e una gamma dinamica di 400–900 nm*.
- Acquisisce immagini confocali fino a 60 volte più velocemente e immagini a altissima risoluzione fino a 8 volte più velocemente che l'FV3000.
- È in grado di contare il numero di fotoni in ogni pixel e rappresenta i risultati come singoli istogrammi di fotoni acquisiti a diverse lunghezze d'onda.
- La rivoluzionaria gamma dinamica permette di contare da alcuni a migliaia di fotoni con linearità rappresentando una funzionalità inedita.
- Risulta di facile uso con minime regolazioni, in modo da ottenere delle immagini e dei dati eccellenti.
*All'ottobre 2023.
"I rilevatori risultano di facile configurazione grazie alla loro ampia gamma dinamica. Sono in grado di gestire bassi segnali ma non si disattivano e sono efficienti con alti segnali. Questo semplifica significativamente la configurazione del microscopio. La modalità di conteggio dei fotoni è una funzione fortemente apprezzata. La sua alta precisione e semplice regolazione, oltre alla sua alta flessibilità, rende il FV4000 uno strumento molto importante per i team di imaging con utenti di diversi gradi di esperienza e per i loro esperimenti di imaging con una complessità variabile.
— Johannes Riemann, Centro di microscopia e di analisi delle immagini, Università di Zurigo
Rivoluzionaria tecnologia del rivelatore SilVIR™: Il nuovo standard all'avanguardia
- Il nostro avanzato rilevatore al silicio SilVIR™ semplifica come non mai l'acquisizione di dati precisi e riproducibili.
- Il rilevatore combina due tecnologie avanzate: un fotomoltiplicatore al silicio (SiPM) e il nostro brevettato* design per un'elaborazione del segnale veloce.
- Un rilevamento a alta dinamica permette al sistema di acquisire segnali a fluorescenza deboli e forti per produrre un'immagine con buona linearità e di quantificare il numero di fotoni per assicurare una migliore analisi delle immagini.
- La disponibilità di una più ampia lunghezza d'onda (400–900 nm) di rilevamento spettrale permette di usare colorazioni a fluorescenza con lunghezza d'onda compresa tra il visibile e l'infrarosso, oltre ad acquisire i dati con un'elevata efficienza spettrale**.
- Il bassissimo rumore si traduce nella definizione di sfondi scurissimi pertanto anche una fluorescenza molto debole può essere supportata.
- Diversamente dalle precedenti tecnologie dei rilevatori, la sensibilità del rilevatore SilVIR rimane costante nel corso del tempo, assicurando l'acquisizione di dati corrispondenti e riproducibili.
*Numero del brevetto US11237047
*All'ottobre 2023
Catena pesante del neurofilamento (NFH) in verde, proteina basica della mielina (MBP) in rosso e pi 1 glutatione S-transferasi (GSTpi) in blu. Immagine di cervelletto di topo acquisita con un obiettivo UPLXAPO40X.
Campione per gentile concessione della Dott.ssa Kattherine Given, Dottorato di ricerca, Ricercatrice responsabile presso il Dipartimento di Neurobiologia dell'Università del Colorado, Anschutz Medical Campus, Aurora (Colorado)
L'istogramma nell'immagine acquisita mediante il rilevatore SilVIR mostra un pattern discreto nel quale l'intensità può essere convertita al numero di fotoni. L'intensità della fluorescenza del rilevatore può essere quantificato, come il numero di fotoni, e il livello dello sfondo è estremamente basso.
"Sono veramente impressionato dal sistema e dalle relative prestazioni. La sua estrema sensibilità è qualcosa di straordinario".
— Sara R. Roig, Specialista della microscopia avanzata, Università di Basel
Maggior informazioni acquisite dalle immagini confocali
La tecnologia TruSpectral aggiornata del sistema, combinata con i rilevatori ad alta sensibilità SilVIR permettono di osservare più dettagli, rendendo possibile l'utilizzo simultaneo di un massimo di sei canali.
Unità neurovascolare di un ippocampo di topo. Blu; nuclei cellulari DAPI, verde; GFAP AF488. Astrociti, giallo; Periciti DsRed, magenta; membrana basale con collagene IV AF647 di vasi sanguigni, grigio AQ-4. Canale d'acqua di astrociti.
Campione per gentile concessione di: Hiroshi Hama e Atsushi Miyawaki, Dinamiche delle funzioni cellulari, RIKEN CBS.
Campione di citoscheletro: Cellule HeLa sottoposte a colorazione con DAPI (blu), Pericentrin (Centrosoma, verde), a-Tubulin (Microtubuli, Alexa-568; rosso) e falloidina (Actina, Alexa-647; magenta).
Campione per gentile concessione di: Preparazione del campione Alexia Ferrand; acquisizione del campione Sara R. Roig e Alexia Ferrand. Imaging Core Facility, Biozentrum, Università di Basel.
Flessibile imaging da macro a micro
Il flusso di lavoro da macro a micro permette di osservare in modo facile il campione target da un livello macroscopico (corpo intero o tessuto) fino a un livello microscopico (cellule o componenti cellulari).
Immagini generale e marginale di un ala di Drosophila (stadio di pupa di 42 ore). Sottoposto a colorazione con falloidina (AlexaFluor 405, F-actina, Ciano), anticorpo di anti-fosfotirosina (AlexaFluor 555, superficie cellulare, rosso) e anticorpo anti-HRP (AlexaFluor 647, assone, blu). Campione per gentile concessione di: Sun Zhengkuan, Shigeo Hayashi, Laboratorio per la segnalazione morfogenetica, Centro per la ricerca delle dinamiche di biosistemi RIKEN, Giappone.
Semplificato imaging confocale con time lapse a alta velocità
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Cellule HeLa marcate con MitoView 720. Imaging XYZT mediante scanner risonante 1K per 30 minuti.
L'imaging con time-lapse risulta più facile con delle funzionalità efficienti:
- Acquisizione di ogni momento delle dinamiche delle cellule vive: Lo scanner risonante può acquisire delle immagini a alta risoluzione su un'ampia area
- Fototossicità minima: La breve durata del pixel dello scanner riduce il tempo in cui il fascio laser localizzato rimane su un solo punto
- Migliore rapporto segnale-rumore: L'alta sensibilità del rilevatore SilVIR è in grado di produrre delle immagini di maggiore qualità a una velocità più elevata
- Maggiore precisione: L'elaborazione con media mobile permette di mantenere le qualifiche e la risoluzione temporale
Dati delle immagini riproducibili tra gli utenti e i sistemi
Il rilevatore SilVIR presenta una minore perdita di sensibilità nel corso del tempo rispetto alle tecnologie dei rilevatori delle precedenti generazioni. Attraverso il nostro LPM (laser power monitor) e il compensatore della deriva Z TruFocus™, è possibile acquisire delle immagini riproducibili in condizioni uniformi. Diversi utenti in diversi giorni possono acquisire le stesse immagini precise mediante le stesse configurazioni. Perfino le immagini acquisite da diversi microscopi FV4000 possono essere confrontate e trattate mediante la stessa scala di intensità del numero di fotoni.
Per migliorare ulteriormente la riproducibilità, il Microscope Performance Monitor facilita la verifica della potenza del laser, della sensibilità di rilevamento e delle prestazioni ottiche del sistema, assicurando che il microscopio FV4000 stia funzionando in modo preciso e efficiente.
Guidare il futuro della ricerca nell'imaging all'avanguardia
Abbiamo progettato il microscopio FV4000 per rendere più efficiente il lavoro dei suoi destinatari: dal responsabile di Core Facility ai singoli utenti che eseguono esperimenti di imaging.
Responsabili di Core Facility
- Operatività affidabile ogni giorno: Il nostro rilevatore SilVIR non si altera nel corso del tempo, pertanto si ottiene la massima continuità operativa senza l'usuale diminuzione di prestazioni.
- Alte prestazioni con bassa manutenzione: Gli utenti possono velocemente acquisire delle immagini eccezionali che sono quantitative e riproducibili, mentre i sistemi Laser Power Monitor e Microscope Performance Monitor forniscono ai responsabili più informazioni e un maggiore controllo sul sistema.
- Aggiornamento costante del proprio sistema con funzionalità all'avanguardia nel settore e la capacità di upgrade: 10 linee laser, sei canali, gamma dinamica da 400 a 900 nm e la capacità di effettuare facilmente l'upgrade all'MPE nello stesso sistema, permette al microscopio di soddisfare le necessità presenti e future.
- Veloce apprendimento e facilità d'uso: Risparmio di tempo nel mostrare agli utenti come confermare le proprie configurazioni grazie al rilevatore SilVIR di facile regolazione.
Responsabili di ricerca e di gruppi di lavoro
- Tecnologia all'avanguardia: La combinazione di funzionalità eccezionali e innovative del microscopio permettono di acquisire delle immagini e dei dati che sorprenderanno i propri colleghi.
- Quantificazione dei segnali di fluorescenza: Il nostro rilevatore SilVIR è in grado di quantificare il numero di fotoni in ogni pixel, anche nell'ambito di un'alta gamma dinamica, da pochi a migliaia di fotoni.
- Risparmio di tempo: I flussi di lavoro automatizzati permettono all'utente di svolgere altre mansioni mentre l'esperimento è in esecuzione.
- Supporto eccezionale: Siamo a completa disposizione del cliente per rispondere a domande e assisterlo nel massimizzare l'efficienza del suo sistema.
Singoli utenti
- Rapida curva di apprendimento: L'FV4000 semplifica la complessità dei sistemi confocali, permettendo ai nuovi utenti di cominciare l'acquisizione di immagini con qualità da pubblicazione con una formazione minima.
- Riduzione dei tempi d'uso del microscopio: La combinazione di velocità e facilità d'uso del microscopio permette l'esecuzione rapida e efficiente di esperimenti, così da ridurre la durata d'uso del microscopio.
- Massima affidabilità: La semplificazione delle regolazioni del microscopio combinata alle informazioni fornite dal Microscope Performance Monitor permette agli utenti di avere una piena consapevolezza dell'affidabilità del sistema prima di iniziare l'attività di imaging, riducendo la necessità di ripetere gli esperimenti.
Affidabilità del supporto e assistenza del microscopio
Il sistema FV4000 è stato progettato per assicurare una manutenzione semplificata:
- Il rilevatore SilVIR basato su semiconduttore è stabile e durevole
- Il sistema Laser Power Monitor verifica in continuo le condizioni di illuminazione e effettua delle regolazioni per mantenere costante l'alimentazione del laser
- Il gestore del sistema può visualizzare i file degli eventi per seguire la programmazione del servizio di manutenzione
Seguiamo i nostri prodotti con l'obiettivo di assicurare un'assistenza e un supporto tecnico veloci. Offriamo diversi piani di supporto per mantenere il microscopio dei clienti al massimo dell'efficienza a un costo prevedibile oltre a fornire opzioni di supporto in remoto. In questo modo non è necessario attendere la visita di un tecnico o di uno specialista in caso di una problematica.
"In confronto ad altri sistemi confocali che ho provato, il vostro è veramente semplice da utilizzare, quindi non si ha il timore di alterare il campione o di percepire eccessivamente complicato il funzionamento generale del sistema e del software. Inoltre richiede un numero minimo di regolazioni da parte dell'utente per produrre dati di qualità ottimale, senza avvertire un limite nelle opzioni".
— Sanni Erämies, Università di Tampere / Core Facility di Imaging Facility Tampere
Tecnologie applicate
Osservazioni più efficienti con la microscopia confocale con supporto dell'NIR
Le tecnologie del sistema migliorate hanno permesso di garantire un più ampio multiplexing per assicurare osservazioni più efficienti di un'immagine.
L'imaging NIR offre delle funzionalità di multiplexing migliori estendendo il profilo di eccitazione (λ_Ex) e rilevamento (λ_Em) del sistema FV4000. Questo permette l'uso di colorazioni supplementari per aiutare a minimizzare la sovrapposizione del segnale di emissione.
- Multiplexing fino a sei canali con l'aggiornamento della tecnologia TruSpectral™ e i nostri rilevatori a alta sensibilità TruSpectral™
- Un reticolo e fessura a VPH (Volume Phase Hologram) a alta efficienza permette il rilevamento di un intervallo di lunghezze d'onda* ineguagliabile nel settore compreso tra 400 nm e 900 nm con un incremento minimo di 1 nm
- Incremento delle opzioni di fluorocromi con un massimo di sei canali a banda larga o rilevatori redshifted per minimizzare le alterazioni e ridurre l'autofluorescenza.
- Combinatori laser modulari per un utilizzo massimo di 10 linee laser da 405 nm a 785 nm in parallelo
* Al marzo 2023.
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Cellule HeLa marcate da 6 fluorocromi.
Nuclei cellulari (DAPI; blu), membrana cellulare (AF488; verde), poro nucleare (AF561; giallo),
microtubulo (Qdot605; magenta), mitocondri (MitoTracker DeepRed; ciano), actina (falloidina AF750; grigio).
Tecnologia da riconoscimenti per una ricerca da riconoscimenti
Gli elementi ottici del sistema FV4000 assicurano un'elevata trasmissione da 400 nm a 1300 nm, inclusi gli scanner risonante e galvanometrico, i quali sono rivestiti in argento invece che alluminio.
I nostri obiettivi X Line™ vincitori di riconoscimenti sono corretti per le aberrazioni cromatiche tra 400–1000 nm. Inoltre possiedono un'elevata apertura numerica, un'eccellente planarità e un'altissima trasmittanza da UV a NIT, incrementando le funzionalità di multiplexing.
Per una migliore affidabilità di co-localizzazione il nostro obiettivo ad immersione ad olio specializzato A Line™ (PLAPON60XOSC2) (ne~1,40) minimizza significativamente l'aberrazione cromatica per assicurare una rigida analisi di co-localizzazione.
Immagini di maggiore qualità fino a 60 volte più velocemente rispetto all'FV3000
Una straordinaria combinazione di tecnologie avanzate forniscono delle immagini a alta qualità con una velocità maggiore rispetto ai sistemi di microscopia a scansione laser convenzionali.
- Immagini a alta risoluzione a elevata velocità: Lo scanner risonante 1K × 1K a FN20 con 0,033 µs per pixel e il rilevatore SilVIR permettono di acquisire rapidamente delle immagini con un rumore minimo
- Eccezionale qualità delle immagini macroscopiche: Veloce acquisizione di immagini macroscopiche sottoposte a unione (stitching) con una qualità eccezionale per ottimizzare il proprio tempo e massimizzare il potenziale della ricerca
"Insieme agli strumenti di ripristino AI rappresenta una perfetta combinazione per un imaging volumetrico di alta qualità e di veloce applicazione".
— Edwin Hernandez, Responsabile di Core Facility, CINC (Cajal International Neuroscience Center)
8 volte più veloce rispetto all'imaging ad altissima risoluzione*
Il microscopio FV4000 permette di acquisire da immagini macro a micro fino a immagini ad altissima risoluzione senza l'ausilio di un hardware addizionale.
Facile: Permette di osservare delle strutture subcellulari mediante i nostri obiettivi HR A Line e il nostro software ad altissima risoluzione (FV-OSR).
Dettagliato: Il software ottimizza automaticamente l'apertura confocale per rilevare delle componenti a alta frequenza e migliorare il loro contrasto fino a una risoluzione minima di 120 nm.
Veloce: Consente di acquisire delle immagini a alta risoluzione otto volte più velocemente rispetto ai sistemi della generazione precedente, grazie al bassissimo rumore del rilevatore SilVIR.
*Confrontato all'FV3000.
Confocal mode 1 AU (first) versus super resolution mode (second)
Capacità di acquisizione di informazioni più approfondite con l'imaging 3D a alta risoluzione
Sferoide cellulare HeLa marcato da DAPI (ciano, nuclei cellulari) e AlexaFluor790 (magenta, Ki-67). L'imaging dell'intero volume dello sferoide è stato possibile attraverso un 785 nm di NIR, sebbene l'osservazione dell'area superficiale di nuclei cellulari sia stata possibile utilizzando un laser da 405 nm.
È possibile acquisire, in modo facile e veloce, immagini 3D ad alta risoluzione di campioni spessi.
Ottimizzazione della profondità, del tempo e della qualità delle immagini
- La penetrazione più in profondità nei tessuti è possibile attraverso una maggiore lunghezza d'onda dell'NIR, oltre a una più ampia gamma dinamica e sensibilità del rilevatore SilVIR.
- L'acquisizione di immagini più in profondità è possibile con meno dispersione e assorbimento visto che i composti a dispersione della luce (es: melanina e eme) assorbono meno luce tra 700–1500 nm.
- Attraverso l'uso di laser al diodo da 685 nm, 730 nm e 785 nm con l'FV4000, si possono acquisire immagini più in profondità rispetto a quelle acquisite con laser visibili.
- Gli obiettivi a silicone con alta NA minimizzano l'aberrazione sferica.
- L'olio al silicone non si asciuga a temperatura ambiente, permettendo l'esecuzione di esperimenti con time lapse più efficienti.
- La deconvoluzione TruSight™ permette di acquisire eccezionali immagini 3D di campioni spessi.
Precisa dinamica delle cellule vive con meno alterazioni
In genere, per assicurare delle ottimali condizioni generali del campione è meglio utilizzare lunghezze d'onda più lunghe per l'eccitazione della fluorescenza con una durata più breve. Applicando una minore illuminazione fototossica è possibile acquisire immagini per periodi più lunghi, permettendo di ottenere dei dati da esperimenti di imaging di cellule vive più corrispondenti e riproducibili.
Il sistema FV4000 non solo fornisce un delicato imaging con time lapse mediante laser a 685 nm, 730 nm e 785 nm, ma è anche dotato di un dedicato compensatore a deriva Z TruFocus Red per mantenere la posizione di messa a fuoco. Questa unità TruFocus Red, soggetta a upgrade, supporta un più ampio intervallo di lunghezze d'onda ed è compatibile con un'ampia gamma di obiettivi, come le nostre serie a alte prestazioni Line™ e A Line™.
"Il nuovo FV4000 permette un imaging più veloce e una migliore conservazione del campione, oltre a una migliore riproducibilità".
— Alexia Ferrand, Specialista della microscopia avanzata, Università di Basel
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Stimolo da luce in time lapse: l'alterazione da laser è stata eseguita su cellule C2C12. Il pseudocolore verde deriva dall'applicazione di FM 1-43. L'immagine è stata acquisita con uno scanner galvonometro da 2 μs e un obiettivo UPLSAPO60XOHR. Un laser da 405 nm è stato usato per applicare delle alterazioni da luce, mentre un laser da 488 nm è stato utilizzato per l'acquisizione dell'immagine. Campione per gentile concessione di: Daniel Bittel e Jyoti Jaiswal, Centro per la ricerca in genetica clinica, Istituto per la ricerca nazionale pediatrico.
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Immagine in time lapse di cellule HeLa sottoposte a colorazione con Hoechst33342 (nucleare, blu), MitoTracker Green (mitocondri, verde), LysoTracker Red (lisosoma, giallo), SiR-Tubulin (tubulina, magenta) e POR-SA-Halo (ER, ciano). Hoechst33342: Ex 405 nm/Em, MitoTracker Green: LysoTrakcer Red: SiR-Tubulin: POR-SA-Halo; Campione per gentile concessione di: Masayasu Taki, Dototrato di ricerca, WPI-ITbM (Institute of Transformative Bio-Molecules), Università di Nagoya, Giappone; Yuichi Asada e Ryusei Aruga, Scuola di specializzazione in scienze, Università di Nagoya, Giappone.
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Immagine in time lapse da 17 ore di cellule HeLa sottoposte a colorazione con MitoTracker Green (mitocondri, magenta) e POR-SA-Halo (ER, ciano). MitoTracker Red: Ex 561nm/Em, POR-SA-Halo: Ex 730nm/Em; Campione per gentile concessione di: Masayasu Taki, Dottorato di ricerca, WPI-ITbM (Institute of Transformative Bio-Molecules), Università di Nagoya, Giappone; Yuichi Asada e Ryusei Aruga, Scuola di specializzazione in scienze, Università di Nagoya, Giappone.
Immagini chiare in profondità
Utilizzando i nostri obiettivi ad immersione in silicone con il microscopio FV4000 è possibile acquisire immagini chiare di elementi e strutture in profondità nel proprio campione. L'olio al silicone possiede un indice rifrattivo simile a quello di cellule o tessuti vivi, riducendo significativamente l'aberrazione sferica, in confronto a aria, acqua o altri oli. Con una minore aberrazione è possibile ottenere delle immagini più chiare in profondità del proprio campione. Inoltre l'olio per immersione al silicone non si asciuga a 37 ℃ (98.6 °F), rendendolo efficace per un imaging con time lapse su un periodo prolungato.
Soluzioni AI per la microscopia confocale
Eccezionali immagini con numerosi dati risparmiando tempo e energie
Possono essere acquisite delle immagini migliori con un risparmio in termini di tempo ed energie. La tecnologia anti-rumore TruAI™ elabora le immagini già a basso rumore acquisite mediante l'FV4000 e riduce ulteriormente il rumore a un livello bassissimo, in modo da ottenere delle eccezionali immagini risonanti composte da numerosi dati.
Per velocizzare l'analisi dell'immagine è possibile pre-addestrare un modello AI in modo che il sistema possa automaticamente segmentare i dati delle immagini, riducendo considerevolmente il carico di lavoro di questo processo manuale, spesso dispendioso in termini di tempo. In seguito la TruAI technology semplifica ulteriormente l'analisi in modo da poter acquisire i dati velocemente.
Dove l'innovazione incontra l'eccellenza di imaging
Attraverso l'integrata riduzione del rumore TruAI è possibile migliorare la propria qualità delle immagini acquisite con lo scanner risonante. Sebbene le immagini ottenute mediante lo scanner risonante risultino efficaci nell'acquisizione delle dinamiche cellulari a alta velocità con una bassa alterazione, rappresentano un compromesso in termini di rapporto segnale-rumore. La riduzione del rumore TruAI può migliorare queste immagini senza sacrificare la risoluzione temporale, utilizzando reti neurali pre-addestrate basate sul pattern del rumore dei rilevatori SilVIR™. Questi pre-addestrati algoritmi di riduzione del rumore TruAi possono essere usati per un'elaborazione istantanea e una post-elaborazione.
Analisi di immagini più veloce e semplice
L'analisi delle immagini richiede l'estrazione dei dati utilizzando le tecniche di segmentazione basate sulle soglie dei valori di intensità. Tuttavia questo può essere dispendioso in termini di tempo ed è influenzato dalle condizioni del campione.
La segmentazione dell'immagine TruAI utilizzando il deep learning semplifica l'elaborazione delle immagini e minimizza le variabili del campione per delle analisi di immagini più precise. Permette di sviluppare delle prestazioni di segmentazione superiori con immagini a debole fluorescenza o tessuti che sono in genere difficili da acquisire utilizzando il semplice metodo di definizione delle soglie.
Configurazioni
Il microscopio FV4000 è progettato per essere modulare, facilitando la configurazione del sistema in base alle proprie applicazioni e budget. È possibile iniziare con uno standard FV4000 e effettuare facilmente il suo upgrade a un imaging multifotonico, aggiungendo il modulo MPE in seguito a un cambio delle proprie esigenze di ricerca.
Una piattaforma per le proprie esigenze di ricerca
Per un campione è inoltre possibile un imaging combinato di tipo multifotonico e monofotonico. Il microscopio FV4000MPE è in grado di sviluppare un imaging di seconda e terza generazione armonica, cosicché diversi ricercatori o utenti possano ottenere il massimo dal proprio sistema. Se la propria ricerca richiede una configurazione personalizzata, la modularità del microscopio e le porte opzionali permettono di personalizzare il sistema con aggiuntivi laser, fotocamere, rilevatori e altro.
Upgrade to FV4000MPE
Scegliere la soluzione che si adatta alle proprie applicazioni
Stativo di microscopio rovesciato
Stativo di microscopio diritto per documentazione
Stativo di microscopio diritto per elettrofisiologia
Stativo per microscopio a incastellatura
Specifiche tecniche
(imaging normale)
(imaging ad alta velocità)
Risorse
Note applicative
Come
Articoli tecnici
Approfondimenti
Video
Sferoide cellulare HeLa marcato con DAPI (ciano, nuclei cellulari) e AlexaFluor790 (magenta, Ki-67)
Cellule HeLa marcate con MitoView 720
https://adobeassets.evidentscientific.com/content/dam/video/video/library/_7_1.mp4
Microscopio rovesciato IX83: Focalizzazione e posizionamento del tavolino usando il controller remoto U-MCZ
La Dott.ssa Rebecca Bonfig presenta la soluzione NIR (Red Near-Infrared) FV3000
Utilizzo del modulo di compensazione della deriva Z del TruFocus™ in modalità Continua nel microscopio FV3000
Utilizzo del modulo di compensazione della deriva Z del TruFocus™ in modalità Singola applicazione nel microscopio FV3000
Microscopio FLUOVIEW™ FV3000: Procedura di spegnimento del sistema
Microscopio rovesciato IX83: Aggiunta di olio all'obiettivo
FV31S-SW: Tutorial sulla funzione layout
FLUOVIEW™ FV3000: procedura di avvio di base del microscopio
FV3000: Flusso di sfere fluorescenti all'interno di vasi sanguigni e sferoidi tumorali costruiti su un dispositivo microfluido
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FV31S-SW - Elaborazione di immagini: Deconvoluzione spettrale
FV31S-SW - Elaborazione di immagini: Proiezione, ritaglio ed esportazione
FV3000: How TruSpectral Technology Works
TruFocus: Compensatore di deriva Z
Obiettivi ad immersione a olio di silicone: Per imaging con cellule vive
FV3000: FV3000 in ricerca tumorale Dott. Yuji Mishima
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FV3000: Introduzione del prodotto
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FV3000: Embrione intero di ratto
FV3000: Tracciatura di vescicole
FV3000: utilizzo di metodi simili alla scansione ad accesso casuale
FV3000: Pancreas del mouse chiarificato da SCALEVIEW-A2
FV3000: Animazione degli sferoidi
FV3000: Fujiwara-crop
FV3000: Dudi-158V-XYT-0001_00000
FV3000: Daphnia 10x DIC
FV3000: Animazione segmentazione cellulare
FV3000: Risonante divisione cellulare
FV3000: Video flusso sanguigno
FV3000: Risonante cellula viva 6x6
FV3000: Funzione di creazione dell'animazione 4D
FV3000: Interattivo rendering del volume
